El electrospinning es un método para producir finas mallas de biopolímeros con una arquitectura tridimensional que imita la matriz extracelular nativa. Debido al pequeño diámetro de las fibras creadas en este proceso, los andamiajes electrospun convencionales tienen poros de un tamaño inferior al diámetro de la mayoría de las células. Estos andamiajes tienen una aplicación limitada en ingeniería tisular debido a su escasa penetración celular. Hemos desarrollado una técnica híbrida de electrospinning/lixiviación de partículas para crear andamiajes con mayor porosidad y mejor penetración celular. Se electrohilaron ácido poli(glicólico) (PGA) y una suspensión de sacarosa y etanol en secuencias iguales y alternas a intervalos de uno, dos y diez minutos cada una. Los andamios revelaron una malla de fibras con microporos de 10 μm y partículas de sacarosa distribuidas uniformemente. La lixiviación de partículas de sacarosa de los andamios de uno o dos minutos reveló estructuras de panal con macroporos interconectados de entre 50 y 250 μm. La lixiviación de sacarosa de los andamios de diez minutos dio lugar a estructuras laminadas con macroporos aislados de entre 200 y 350 μm. El tamaño de los macroporos fue directamente proporcional a la duración del intervalo de hilado de la sacarosa. Tras 24 horas de cultivo celular, los andamiajes hilados convencionalmente no demostraron penetración celular. Por el contrario, los andamios de PGA/sacarosa mostraron una penetración celular profunda. Esta técnica híbrida representa un método novedoso para generar andamiajes electrospun con poros interconectados adecuados para el crecimiento celular.
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