es un árbol medicinal y ornamental importante, ampliamente distribuido en áreas tropicales y subtropicales. Sin embargo, sus semillas pierden viabilidad rápidamente después de la cosecha, lo que ha creado obstáculos en la propagación a gran escala. Aquí, describimos el desarrollo de un sistema de organogénesis de novo rápido y eficiente para, incorporando tanto vías de regeneración indirecta como directa. El medio basal óptimo utilizado a lo largo del protocolo fue ½ MS suplementado con 30 g/L de glucosa, con todos los cultivos mantenidos a 26-28 grados C. Para la vía indirecta, se indujo callo desde ambos extremos de cada hipocótilo en medio basal suplementado con 0.2 mg·L de ácido 2,4-diclorofenoxiacético (2,4-D) y 0.5 mg·L de 6-bencilaminopurina (6-BA) en condiciones de oscuridad. Los callos inducidos se diferenciaron posteriormente en brotes adventicios en medios basales que contenían 0.5 mg·L de ácido indol-3-butírico (IBA), 0.15 mg·L de Kinetina (KIN) y 1 mg·L de 6-BA bajo un fotoperíodo de 16 horas, resultando en una tasa de inducción de callo del 140% y una tasa de diferenciación del 51%. Para la vía de regeneración directa, los brotes cultivados en medio con 0.5 mg·L de IBA y 1 mg·L de 6-BA lograron una tasa de brotación del 100% con un coeficiente de regeneración de aproximadamente 3.2. Los brotes adventicios regenerados enraizaron con éxito en medio suplementado con 0.5 mg·L de ácido naftalenoacético (NAA) y fueron aclimatados en condiciones de invernadero para producir plántulas viables. Este sistema de regeneración utiliza eficientemente explantes de plántulas estériles, no está limitado por factores estacionales o ambientales, y mejora significativamente la eficiencia de propagación de. Estos métodos de micropropagación optimizados también proporcionan una plataforma robusta para futuros estudios de transformación genética utilizando hipocótilos y brotes como explantes.